- Присутствие нетипичных для покрытосеменных растений сверхдлинноцепочечных полиненасыщеных жирных кислот в тканях растений приводит к существенным изменениям устойчивости к патогенам и насекомым.
- Изменение устойчивости трансгенных растений, синтезирующих сверхдлинноцепочечные полиненасыщеные жирные кислоты, к патогенам и насекомым связано с изменением уровней гормонов, регулирующих ответы на биотические стрессы, жасмоновой кислоты и салициловой кислоты.
- Арахидоновая кислота, образованная в тканях высших растений в результате генетической модификации или нанесенная на поверхность листьев, изменяет защитные реакции растений и модулирует устойчивость к патогенам.
- Разные типы повреждений растительных тканей дифференциально изменяют профили оксилипинов. Повреждения, вызванные механическим поранением или насекомыми с колюще-сосущим ротовым аппаратом, стимулируют образование и выделение метаболитов гидропероксидлиазной ветви, а повреждения, вызванные грызущими насекомыми, сопровождаются подавлением этих процессов. В основе наблюдаемой супрессии лежит регуляция экспрессии генов пути биосинтеза оксилипинов.
- Подавление эмиссии летучих метаболитов гидропероксидлиазной ветви вызывается активными компонентами, присутствующими в ротовых секретах грызущих насекомых, и направлено на предотвращение инициирования защитных ответов у соседних растений.
- Адаптация растений к условиям дефицита воды сопровождается изменением содержания оксилипинов алленоксидсинтазной и гидропероксидлиазной ветвей. Уровень 12-оксофитодиеновой кислоты в листьях коррелирует с засухоустойчивостью растений.
2.Savchenko T., Kolla V., Wang C.Q., Nasafi Z., Hicks D., Phadungchob B., Chehab W., Brandizzi F., Froehlich J., Dehesh K. Functional convergence of oxylipin and ABA pathways controls stomatal closure in response to drought. Plant Physiology, 2014, 164(3):1151-1160
3.Савченко Т.В., Застрижная О.М., Климов В.В. Оксилипины и устойчивость растений к абиотическим стрессам. Биохимия, 2014, 79(4):460-477
4.Savchenko T. and Dehesh K. Insect herbivores selectively mute GLV production in plants. Plant Signaling and Behavior, 2013, 8(5):e24136
5.Buerstenbinder K., Savchenko T., Mueller J., Adamson A., Stamm G., Kwong R., Zipp B., Chandrasekaran D., and Abel S. Arabidopsis calmodulin-binding IQD1 localizes to microtubules and interacts with kinesin light chain-related protein-1. The Journal of Biological Chemistry, 2013, 288(3):1871-1882
6.Savchenko T., Pearse I., Ignatia L., Karban R., Dehesh K. Insect herbivores selectively suppress the HPL branch of the oxylipin pathway in host plants. The Plant Journal, 2013, 73(4):653-662
7.Laluk K., Prasad K. V., Savchenko T., Celesnik H., Dehesh K., Levy M., Mitchell-Olds T., Reddy A. The calmodulin-binding transcription factor SIGNAL RESPONSIVE1 is a novel regulator of glucosinolate metabolism and herbivory tolerance in Arabidopsis. Plant and Cell Physiology, 2012, 53 (12):2008-2015
8.Xiao Y., Savchenko T., Baidoo E., Chehab W., Hayden D., Tolstikov V., Corwin J., Kliebenstein D., Keasling J., Dehesh K. Retrograde signaling by the plastidial metabolite MEcPP induces selected stress responses. Cell, 2012, 149:1525-1535
9.Chehab W., Kim S., Savchenko T., Kliebenstein D., Dehesh K., Braam J. Intronic T-DNA insertion renders Arabidopsis opr3 a conditional JA producing mutant. Plant Physiology, 2011, 156:770-778
10.Bostock R, Savchenko T., Lazarus C, Dehesh K. Eicosapolyenoic acids: novel MAMPs with reciprocal effect on oomycete-plant defense signaling networks. Plant Signaling & Behavior, 2011, 6 (4):531-533
11.Savchenko T., Walley J., Chehab W., Xiao Y., Kaspi R., Pye M., Mohamed M., Lazarus C, Bostock R, Dehesh K. Arachidonic acid: an evolutionary conserved signaling molecule modulates plant stress signaling networks. The Plant Cell, 2010, 22:3193-3205
12.Walley J., Kelley D., Savchenko T., Dehesh K. Investigating the function of CAF1 deadenylases during plant stress responses. Plant Signaling & Behavior, 2010, 5(7):802-805
13.Chehab E. W., Kaspi R, Savchenko T., Rowe H., Negre-Zakharov F., Kliebenstein D., Dehesh K. Distinct roles of jasmonates and aldehydes in plant defense responses. PLoS One, 2008, 3(4):e1904
14.Fabro G., Di Rienzo J. A., Voigt C.A., Savchenko T., Dehesh K., Somerville S., Alvarez M. Genome-wide expression profiling Arabidopsis at the stage of Golovinomyces cwhoracearum haustorium formation. Plant Physiology, 2008, 146:1421-1439
15. Abel S., Savchenko T., Levy M. Genome-wide comparative analysis of the IQD gene families in Arabidopsis thaliana and Oryza sativa. BMC Evolutionary Biology, 2005, 5:72
16.Yokthongwattana K., Savchenko T., Polle J.E., Melis A. Isolation and characterization of a xanthophyll-rich fraction from the thylakoid membrane of Dunaliella salina (green algae). Photochemical & Photobiological Sciences, 2005, 4(12): 1028-1034
17.Premkumar L., Greenblatt H. M., Bageshwar U. K., Savchenko T., Gokhman I., Sussman J. L., and Zamir A. Three-dimensional structure of a halotolerant algal carbonic anhydrase predicts halotolerance of a mammalian homolog. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2005, 102(21):7493-7498
18.Bageshwar U., Premkumar L., Gokhman I., Savchenko T., Sussman J., Zamir A. Natural protein engineering: a uniquely salt-tolerant, but not halophilic, <rtype carbonic anhydrase from algae proliferating in low- to hyper-saline enviroments. Protein Engineering, Design and Selection, 2004, 17:191–200
19.Zamir A., Azachi M., Bageshwar U., Fisher M., Gokhman I., Premkumar L., Sadka.A., Savchenko T. Molecular and functional adaptations underlying the exceptional salt-tolerance of the alga Dunaliella salina. In Halophilic microorganisms, Ed: Antonio Ventosa, Publisher: Springer Verlag Berlin Heidelberg, 2003:165-176
20.Premkumar L., Greenblatt H., Bageshwar U., Savchenko T., Gokhman I., Zamir A. and Sussman J. Identification, cDNA cloning, expression, crystallization and preliminary X-ray analysis of an exceptionally halotolerant carbonic anhydrase from Dunaliella salina. Acta Crystalographica, Section D, 2003, 599(6):1084-1086
21.Premkumar L., Greenblatt H., Sussman J., Bageshwar U., Savchenko T., Gokhman I. and Zamir A. The first crystal structure of a halotolerant protein: carbonic anhydrase from D. salina at 1.86 Å resolution. Acta Crystalographica, 2002, A58 (Supplement), C307
22.Savchenko T., Changes of Dunaliella salina cells protein composition induced by salt stress. Proceeding of Azerbaijan Academy of Sciences, 1998, 1(6):26-31
Патент
Dehesh K., Savchenko T. Hydroperoxide lyase genes and tolerance to abiotic stress in plants Patent WO/2010/101885